ВЛИЯНИЕ ПРОДОЛЖИТЕЛЬНОСТИ ТВЕРДОФАЗНОЙ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЙ ФЕРМЕНТАЦИИ НА ДИНАМИКУ МИКОТОКСИНОВ

Для улучшения физико-химических свойств отходов сельского хозяйства и пищевой промышленности с перспективой использования их для кормления животных все шире используют технологию биоферментирования с использованием микроорганизмов, собранных в закваски, к которым относится и закваска еснова. Большинство исходных субстратов содержат микотоксины и микотоксинобразующие микромицеты, которые в благоприятных температурно-влажностных условиях ферментирования могут продуцировать микотоксины. Исходя из этого, изучено влияние разной продолжительности биоферментации (12, 24, 36, 48 ч.) на количественное содержание Т-2 токсина, афлатоксина В1, охратоксина А. Установлено, что через 12 ч. микробиологической ферментации количество Т2-токсина снизилось в 6,8 раза в сравнении с исходным уровнем, при дальнейшем ферментировании до 48 ч. включительно не происходит накопления Т-2 токсина выше ДК; при разной продолжительности ферментации наблюдаются резкие перепады в концентрации афлатоксина В1 по отношению к исходному количеству, однако, все колебания были в пределах ДК; при ферментации наблюдался рост концентрации охратоксина А и спустя 24, 36 и 48 ч. уровень его превысил ДК соответственно в 3,4, 6,8 и 5,0 раз. Для использования технологии твердофазного микробиологического ферментирования на основании полученных результатов даны следующие рекомендации: предварительно исследовать субстраты на качественное и количественное содержание Т2-токсина, афлатоксина В1 и охратоксина А; для снижения концентрации Т-2 токсина и афлатоксина В1 в субстратах можно использовать 12-, 24- и 36-часовой режим биоферментации с заключительным контролем уровня микотоксинов; при наличии в исходном субстрате охратоксина А технологию микробиологической ферментации применять нельзя.

To improve the physicochemical properties of agricultural and food industry waste with the prospect of using them for animal feed, biofermentation technology is increasingly used using microorganisms collected in starters, which include Lesnov's starter. Most of the initial substrates contain mycotoxins and mycotoxin-forming micromycetes, which can produce mycotoxins under favorable temperature and humidity fermentation conditions. Based on this, we studied the effect of different duration of biofermentation (12, 24, 36, 48 h.) on the quantitative content of T-2 toxin, aflatoxin B1, ochratoxin A. The studies found that after 12 hours of microbiological fermentation, the amount of T2 toxin decreased by 6.8 times compared to the initial level, with further fermentation up to and including 48 hours, there is no accumulation of T-2 toxin above the MAC; with different duration of fermentation, sharp changes in the concentration of aflatoxin B1 in relation to the initial amount are observed, however, all fluctuations were within the MAC; during fermentation, an increase in the concentration of ochratoxin A was observed and after 24, 36 and 48 hours its level exceeded the MAC by 3.4; 6.8 and 5.0 times, respectively. For those using solid-phase microbiological fermentation technology, the following recommendations are given based on the obtained results: preliminary study of substrates for qualitative and quantitative content of T2 toxin, aflatoxin B1 and ochratoxin A; to reduce the concentration of T-2 toxin and aflatoxin B1 in substrates, 12-, 24- and 36-hour biofermentation mode with final control of the mycotoxin level can be used; if the initial substrate contains ochratoxin A, the microbiological fermentation technology cannot be used.